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        簡述純化柱的規范使用方法

        閱讀:70發布時間:2026-1-21

           純化柱是色譜分析、樣品前處理及生物制藥中實現目標物分離、富集與凈化的核心耗材,廣泛應用于HPLC、SPE(固相萃取)、蛋白純化及水處理等領域。其性能直接決定回收率、純度與實驗重復性。若操作不當,易因裝填不均、流速失控、溶劑不兼容或再生失效,導致柱效下降、背壓升高甚至柱床干裂。掌握純化柱的規范使用方法,是實現分得清、收得高、用得久的關鍵保障。

         


          一、使用前準備
          充分活化:
          反相柱(如C18)先用甲醇或乙腈沖洗5–10柱體積,再轉至水相;
          離子交換柱用高鹽緩沖液平衡;
          避免干柱上樣,防止氣泡滯留破壞流路均勻性;
          溶劑互溶過渡:樣品溶劑與初始流動相需互溶,否則易析出沉淀堵塞柱頭。
          二、上樣與洗脫
          上樣量適中:不超過柱載量(通常≤5%柱體積),過載會導致峰拖尾或穿透;
          流速合理匹配:
          分析柱:0.5–2mL/min;
          制備柱:按線速度(cm/h)計算,避免過高流速降低分離效率;
          梯度洗脫優化:緩慢改變洗脫強度,提升分辨率,尤其對復雜混合物。
          三、柱后處理
          清洗:
          反相柱:先用水/有機相(如95:5)沖洗鹽分,再用高比例有機相(如90%甲醇)保存;
          蛋白純化柱:用0.5MNaOH或20%乙醇消毒,去除內毒素與微生物;
          正確保存:
          反相柱存于甲醇/乙腈中;
          親水柱(如HILIC)可存于乙腈/水(90:10);
          禁止將含緩沖鹽的柱子直接放入純有機相,防止鹽析結晶堵塞。
          四、壓力與溫度監控
          背壓異常預警:壓力突升可能因篩板堵塞,需反沖或更換入口濾片;
          控溫使用:高溫可提升傳質效率,但超過柱溫限(通常60℃)會加速鍵合相水解。
          五、再生與壽命管理
          定期再生:
          C18柱可用強溶劑(如異丙醇)沖洗強保留雜質;
          離子交換柱用NaCl梯度洗脫殘留蛋白;
          記錄使用次數:建立《純化柱日志》,標注樣品類型、壓力變化、理論塔板數,預判更換周期。
          六、安全與禁忌提醒

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